Laboratorio di Ricerca Industriale e Trasferimento Tecnologico accreditato dalla Regione Emilia Romagna (DGR 1213/2007) con Delibera n.GPG/2012/119 del 6 febbraio 2012.
Laboratorio di Ricerca Industriale e Trasferimento Tecnologico accreditato dalla Regione Emilia Romagna (DGR 1213/2007) con Delibera n.GPG/2012/119 del 6 febbraio 2012.
Il Centro di Microscopia Elettronica fornisce competenze tecniche e strumentazioni scientifiche per lo studio delle ultrastrutture, sia nel settore delle scienze della vita che in quello della scienza dei materiali. In particolar modo, il personale attivo presso il Centro presenta una consolidata esperienza in ambito scientifico con particolare riguardo all’utilizzo e all’applicazione di tecniche di microscopia elettronica (a Trasmissione, a Scansione, a Forza Atomica e Microanalisi ai raggi X) occupandosi dell'allestimento dei campioni, dell'osservazione e dell'interpretazione dell'immagine. L’utilizzo del microscopio elettronico permette di raggiungere una risoluzione dell’immagine di parecchi ordini di grandezza superiore rispetto al microscopio ottico rendendo possibile, ad esempio, l’osservazione di sezioni sottili di tessuti ad ingrandimenti tali da consentire lo studio di strutture subcellulari (organuli intracitoplasmatici, citoscheletro, ecc.) e di componenti macromolecolari dello stroma tissutale (collagene, protocollagene, ecc.).
Il Centro di Microscopia Elettronica collabora con Ricercatori dell'Ateneo, Aziende Ospedaliere, Enti Pubblici e privati, Industrie e Professionisti mettendo a disposizione strumentazione scientifica all'avanguardia e personale altamente specializzato per fornire le competenze tecniche specifiche per la preparazione e l'osservazione di campioni in microscopia elettronica e a forza atomica.
Le applicazioni coprono i più diversi campi di interesse in una grande varietà di settori, quali ad esempio: Biologia animale e vegetale, Scienza dei Materiali, Scienze Minero-petrografiche, Chimiche, Geochimiche, Micropaleontologiche, Beni culturali e problematiche ambientali, Scienze mediche e cliniche.
Per svolgere le proprie attività il Centro si avvale delle seguenti tecniche fondamentali.
Microscopia elettronica a scansione (SEM): si possono ottenere informazioni relative alla morfologia o topografia superficiale di aree molto grandi (un mm di lato) fino a dimensioni sub-micrometriche. La microanalisi associata al SEM consente l'dentificazione degli elementi chimici presenti in aree selezionate e in particelle di dimensioni non inferiori al micron. Lo spettrometro a dispersione di energia (EDS) fornisce l'analisi quantitativa anche di elementi con n° atomico inferiore a 10 e le mappe composizionali. Oltre ai materiali conduttivi, si possono osservare, senza deposizione di film metallico necessario per il SEM convenzionale, anche campioni isolanti, ad es. pezzi inglobati in resina, ceramiche, carta, polimeri, polveri ambientali, frammenti vegetali, tessuti di origine animale ed umana fissati e disidratati.
Microscopia elettronica a trasmissione (TEM): è possibile osservare l’ultrastruttura di preparati biologici, la morfologia di nano particelle, identificare zone difettive in materiali cristallini. Si possono osservare sezioni ultrasottili di preparati biologici, polveri, films depositati, frammenti metallici assottigliati.
Microscopia a forza atomica (AFM): si può determinare la topografia superficiale fino a livello nanometrico, le dimensioni dei particolari anche nella direzione verticale al piano del campione (section analysis), la rugosità, lo spettro di Fourier, la presenza di domini magnetici di dimensioni submicrometriche (in MFM) in abbinamento alla topografia dell'area scandita. Si possono osservare principalmente film depositati, metalli, polimeri, materie plastiche, prodotti ceramici, nastri magnetici, preparati istologici essiccati, frammenti vegetali.
Microscopio elettronico a scansione, (SEM) Zeiss EVO 40:
Microscopio elettronico a scansione: SEM EVO Zeiss
Microscopio elettronico a scansione: SEM EVO Zeiss detector EBSD
Microscopio elettronico a trasmissione, TEM Zeiss EM 910:
Microscopio elettronico a scansione in Field Emission, (FEG SEM) Zeiss Gemini 460:
Microscopio elettronico a trasmissione (TEM), ThermoFisher TalosTM L120C G2:
Microscopio Iperspettrale Cytoviva:
Strumentazione per preparative:
Servizio di Microscopia Elettronica presso il Centro di Microscopia Elettronica dell’Università degli Studi di Ferrara, Polo Chimico Biomedico
Via Luigi Borsari 46 - 44121 Ferrara
+39 0532 455 940/845/725
+39 0532 455064
Prof. Luca Maria Neri
luca.neri@unife.it
+39 0532 455940
Dr Erika Rimondi (Coordinatrice Tecnica CME)
erika.rimondi@unife.it
+39 0532 455845
Dr Paola Boldrini
Dr Cinzia Brenna
Dr Edi Simoni
Lo staff si occupa: i) dell’analisi della problematica proposta dal cliente; ii) della formulazione di una strategia adeguata per la risoluzione del problema; iii) dell’accettazione dei campioni; iv) della preparazione dei campioni per l’osservazione al microscopio; v) del supporto all’osservazione, all’analisi dei preparati e all'interpretazione dei dati.
| Sfriso AA, Mistri M, Munari C, Moro I, Wahsha M, Sfriso A, Juhmani AS. Environ Int. (2019) Hazardous effects of silver nanoparticles for primary producers in transitional water systems: The case of the seaweed Ulva rigida C. Agardh. 131:104942. doi: 10.1016/j.envint.2019.104942 |
| Pezzi M, Scapoli C, Mamolini E, Leis M, Bonacci T, Whitmore D, Krčmar S, Furini M, Giannerini S, Chicca M, Cultrera R, Faucheux MJ (2018) Ultrastructural characterization of sensilla and microtrichia on the antenna of female Haematopota pandazisi (Diptera: Tabanidae). Parasitol Res. 117(4):959-70. doi: 10.1007/s00436-018-5760-7. PubMed |
| Caselli E, Pancaldi S, Baldisserotto C, Petrucci F, Impallaria A, Volpe L, D'Accolti M, Soffritti I, Coccagna M, Sassu G, Bevilacqua F, Volta A, Bisi M, Lanzoni L, Mazzacane S (2018) Characterization of biodegradation in a 17th century easel painting and potential for a biological approach. PLoS One. 13:e0207630. doi: 10.1371/journal.pone.0207630. PubMed |
| Zamboni P, Giaquinta A, Rimondi E, Pedriali M, Scanziani E, Riccaboni P, Veroux M, Secchiero P, Veroux P (2018) A novel endovenous scaffold for the treatment of chronic venous obstruction in a porcine model: Histological and ultrastructural assessment. Phlebology. 18:268355518805686. doi: 10.1177/0268355518805686. PubMed |
| Munari C, Bocchi N, Parrella P, Granata T, Moruzzi L, Massara F, De Donati M, Mistri M (2017) The occurrence of two morphologically similar Chaetozone (Annelida: Polychaeta: Cirratulidae) species from the Italian seas: Chaetozone corona Berkeley & Berkeley, 1941 and C. carpenteri McIntosh, 1911. The European Zoological Journal. 84(1): 541-553. doi.org/10.1080/24750263.2017.1393843 |
| Di Lecce D, Hu T, Hassoun J (2017) Electrochemical features of LiMnPO4 olivine prepared by sol-gel pathway. Journal of Alloys and Compounds. 93:730-37. doi: 10.1016/j.jallcom.2016.09.193 |
| Dezfuli BS, DePasquale JA, Castaldelli G, Giari L, Bosi G (2017) A fish model for the study of the relationship between neuroendocrine and immune cells in the intestinal epithelium: Silurus glanis infected with a tapeworm. Fish Shellfish Immunol. 64:243-250. doi: 10.1016/j.fsi.2017.03.033. PubMed |
| Bosi G, Giari L, DePasquale JA, Carosi A, Lorenzoni M, Dezfuli BS (2017) Protective responses of intestinal mucous cells in a range of fish-helminth systems. J Fish Dis. 40(8):1001-1014. doi: 10.1111/jfd.12576. PubMed |
| Lombardo L, Martini M, Cervinara F, Spedicato GA, Oliverio T, Siciliani G (2017) Comparative SEM analysis of nine F22 aligner cleaning strategies. Prog Orthod. 18(1):26. doi: 10.1186/s40510-017-0178-9. PubMed |
| Pezzi M, Leis M, Chicca M, Falabella P, Salvia R, Scala A, Whitmore D (2017) Morphology of the Antenna of Hermetia illucens (Diptera: Stratiomyidae): An Ultrastructural Investigation. J Med Entomol. 54:925-33. doi: 10.1093/jme/tjx055. PubMed |
| Codice | Descrizione sintetica della prestazione offerta | Prezzo (€ per ora) |
| Microscopia a trasmissione - TEM | ||
| TEM-001 | Fissazione | 122.90 |
| TEM-002 | Inclusione | 69.60 |
| Ultramicrotomia (1 Blocchetto) | ||
| TEM-003 | A. sezioni semifini | 8.20 |
| TEM-004 | B. sezioni ultrasottili colorate | 46.10 |
| TEM-005 | Osservazione (1 ora) | 122.90/ora |
| Microscopia a scansione - SEM | ||
| SEM-001 | Fissazione | 122.90 |
| SEM-002 | Critical point dryer | 28.70 |
| SEM-003 | Metallizzazione ad oro fino a 7 campioni | 61.40 |
| SEM-004 | Metallizzazione a grafite fino a 7 campioni | 15.40 |
| SEM-005 | Osservazione (1 ora) | 122.90/ora |
| SEM-006 | Microanalisi a raggi X | 122.90/ora |
Alcune prestazioni/prodotti offerti possono usufruire della collaborazione/integrazione con altri servizi del Laboratorio LTTA.
Il centro di microscopia elettronica offre possibilità di tirocinio curricolare per studenti iscritti a corsi di laurea triennale e magistrale.
Il servizio di microscopia confocale e digitale si propone come un centro dedicato all’innovazione nella tecnologia dell’imaging cellulare. Il notevole progresso tecnologico registrato negli ultimi tempi negli strumenti d’indagine e nell’analisi d’immagine ha permesso di ottenere elevati risoluzione e contrasto anche da campioni complessi, aprendo importanti nuove prospettive nel campo delle sperimentazioni biologiche. Contemporaneamente lo sviluppo di sonde specifiche, sintetiche e ingegnerizzate, per marcare e seguire dinamicamente strutture cellulari o parametri fisiologici ha permesso ai ricercatori di distinguere accuratamente diverse strutture subcellulari in un singolo esperimento.
L’obiettivo del centro di microscopia avanzata è quello di rappresentare un punto di riferimento dando accesso a strumentazioni, metodiche di acquisizione d’immagini e tecnologie analitiche sofisticate e altamente competitive. L’imaging in live è diventato uno strumento indispensabile in numerosi laboratori di ricerca e una metodologia di base praticata in molte discipline mediche, al fine di studiare l’architettura cellulare e l’analisi in real-time di processi molecolari dinamici in cellule viventi, aiutando nella comprensione delle funzioni cellulari e tissutali. Inoltre permette di eseguire saggi di high throughput in processi biologici, estendendo il campo di applicabilità e di interesse anche alle ditte farmaceutiche.
La microscopia confocale offre diversi vantaggi, quali il controllo della profondità del campo, il notevole miglioramento nella qualità dell’immagine e la possibilità di eseguire sezioni ottiche seriali, ottenendo immagini in 3-D ad alta risoluzione e permettendo di analizzare eventi intracellulari dinamici. L’imaging in live richiede tempi molto brevi di acquisizione per catturare gli eventi eccezionalmente rapidi che accadono nella cellula. A tal fine il centro di microscopia è fornito di un sistema confocale a campo esteso (Live Scan Swept Field Confocal- Nikon), che si dimostra ideale per l’imaging di eventi intracellulari molto veloci, quali ad esempio le dinamiche dello ione calcio, che rappresentano uno dei campi di maggiore competenza del laboratorio. Di recente introduzione, l’Intravital Olympus Imaging, un sistema confocale che permette l’imaging e lo studio di parametri mitocondriali in vivo. Ad esso si aggiunge una piattaforma per screening Olympus, disegnata per acquisizione di immagini e analisi di dati completamente automatizzate e ottimizzate per visualizzare processi molto veloci in cellule vive. Questi sistemi costituiscono strumenti perfetti per lo sviluppo di saggi e per high-content screening, combinando la modularità e la flessibilità di un microscopio con l’automazione, la riproducibilità e l’affidabilità dei risultati. La tecnologia disponibile nel nostro laboratorio, coadiuvata dall’esperienza decennale in materia di microscopia, dalla disponibilità di sonde ricombinanti, dalle competenze nello sviluppo dei protocolli più adeguati, permette quindi di rispondere alle necessità del mondo scientifico ed offre uno screening funzionale per tracciare cambiamenti dinamici nel tempo in centinaia di migliaia di cellule viventi.
Di recente acquisto il sistema XF96 Extracellular Flux Analyzer, Seahorse Bioscience, lettore di piastre per studi del metabolismo cellulare, permette la misurazione in tempo reale del metabolismo in cellule vive, quantificando simultaneamente la respirazione mitocondriale e la glicolisi.
In conclusione sono molti i ricercatori che possono trarre beneficio nell’avere accesso a tale tecnologia di avanguardia, specialmente ora che inizia la fase post-genomica della ricerca biomedica.
Il centro avanzato di microscopia confocale del laboratorio LTTA si propone come un servizio altamente competitivo, fornendo competenze tecniche e strumentazioni di imaging innovative e sofisticate, con un campo di applicabilità che si estende dalla ricerca biomedica di base a servizi più specifici, quali analisi di screening di attività molecolare di interesse nel campo farmaceutico. Il centro dispone di numerose strumentazioni di avanguardia, quali le piattaforme Xcellence/ScanˆR della Olympus per live cell imaging e high-content screening e di un sistema di microscopia confocale della Nikon per lo studio di eventi intracellulari dinamici e molto rapidi e di un sistema di Intravital Olympus Imaging per lo studio di parametri mitocondriali in vivo.
Inoltre, di recente è stato acquistato il sistema XF96 Extracellular Flux Analyzer, Seahorse Bioscience, lettore di piastre per studi del metabolismo cellulare.
Il monitoraggio in live del comportamento cellulare, mediante l’utilizzo di sonde specifiche, consente di effettuare saggi e analisi molto versatili, estendendo il campo di applicazione dalla ricerca di base a studi più specifici quali screening di molecole farmacologicamente attive monitorando la proliferazione, la sopravvivenza e il differenziamento cellulare in seguito a trattamenti farmacologici in vitro e/o in vivo; precisamente si eseguono:
Scan^R workstation
Stazione automatizzata per l’imaging digitale di parametri citometrici su cellule vive. Il riconoscimento automatico degli oggetti permette l’utilizzo di protocolli per high content throughput per i principali eventi cellulari (apoptosi, necrosi, autofagia/mitofagia, ciclo cellulare, alterazioni morfologiche, espressione proteica, analisi automatizzata per FISH, localizzazioni e traslocazioni proteiche).
Xcellence workstation
Sistema di microscopia a fluorescenza ad alta risoluzione in lunghezza d’onda multipla. L’elevata risoluzione del sistema permette l’analisi di strutture intracellulari e della loro organizzazione in 2D/3D (i.e. mitocondri, reticolo endoplasmico, citoscheletro). Inoltre le lunghezze d’onda multiple e la versatilità del sistema permettono le misure in live di sonde raziometriche quali fura o pericam.
Live Scan Swept Field Confocal
Sistema di microscopia a fluorescenza confocale ad alta velocità per l’analisi in vivo di parametri cellulari multipli. Il sistema permette di misurare contemporaneamente parametri cellulari quali concentrazione di calcio (citoplasmatica/mitocondriale), traslocazione di proteine, riorganizzazione di strutture cellulari, generazione/ scomparsa /fusione di vescicole. Sono installate tre linee di eccitazione basate su laser a stato solido (488nm, 561nm, 635nm) e due diversi filterset di emissione (488/561, 488/643). Questo sistema permette la visualizzazione contemporanea di due differenti fluorofori.
Seahorse XF96 Extracellular Flux Analyzer
Lo Seahorse XF96 Extracellular Flux Analyzer permette la misurazione del metabolismo cellulare in real-time, mediante quantificazione accurata della respirazione mitocondriale e della glicolisi cellulare. Questa strumentazione fornisce misurazioni in vitro rilevanti per lo studio del metabolismo cellulare in cellule primarie e in linee cellulari tumorali, utilizzando sia cellule aderenti che in sospensione o mitocondri isolati e si basa sulla rilevazione simultanea dei livelli di ossigeno e del pH nel mezzo. Le conoscenze che ne derivano sui processi metabolici consentono di integrare informazioni sulla fisiologia cellulare con dati di proteomica e genomica per una migliore comprensione delle malattie neurodegenerative, cardiovascolari, infiammatorie (quali diabete e obesità) e del cancro.
Sistema Intravital Olympus BX51WI
Sistema manuale per l’imaging digitale e confocale di parametri mitocondriali in animali vivi (topo da laboratorio). L’utilizzo dei LED ad elevata potenza e la capacità di acquisizione in confocale permettono il rilevamento e l’analisi di sonde localizzate in tessuti o nella massa tumorale, diversi micron al di sotto della lente dell’obiettivo. L’acquisizone in lunghezza d’onda multipla permette le misure in live di sonde raziometriche come FURA red e JC-1. Si possono infatti condurre esperimenti in vivo di potenziale di membrana mitocondriale, flusso intracellulare di calcio (mitocondriale e citosolico) e morfologia mitocondriale.
Filterset e camera:
CrEST con profilo spettrale DAPI/FITC/ORANGE/RFP e camera Photometrics EVOLVE
Info dal produttore:
Crestopt
Photometrics
Ingrandimenti:
LUMPLFLN 40X W
Apertura numerica: 0.8
Distanza di lavoro (mm) : 3.3
Info dal produttore:
Olympus
UPLFLN 10X
Apertura numerica: 0.3
Distanza di lavoro (mm): 10
Info dal produttore:
Olympus
Controllo ambientale:
Termostato per piccoli roditori con controllo digitale della temperatura
Info dal produttore: Supertech
Microiniettore:
Eppendorf Transjector per la microiniezione di molecole in situ (nella massa tumorale o in una determinata zona anatomica dell’animale anestetizzato) è dotato di un sistema incorporato di pressione/vuoto che consente di raccogliere, trattenere e rilasciare qualsiasi tipo di sostanza (farmaci, composti chimici, sonde e oociti).
Siringa Eppendorf in acciaio
Femtotips sterile Eppendorf in vetro
Diametro di apertura (μm): 0.5
Volume di riempimento (μl): 10-15
Info dal produttore: Eppendorf
Servizio di Microscopia Digitale e Confocale
Laboratorio per le Tecnologie delle Terapie Avanzate (LTTA)
Area Polo Chimico Biomedico ‘CUBO’ – piano secondo
Via Fossato di Mortara 70 - 44121 Ferrara
+39 0532 455806
+39 0532 455351
Prof. Paolo Pinton
pnp@unife.it
+39 0532 455802
Dr Sonia Missiroli
sonia.missiroli@unife.it
+39 0532 455806
Dr Carlotta Giorgi
Dr Massimo Bonora
Dr Sonia Missiroli
Lo staff si occupa i) dell’analisi della problematica proposta dal cliente, ii) dell’accettazione dei campioni e della loro preparazione, iii) della progettazione ed esecuzione di saggi al microscopio, iv) dell’analisi dei risultati, v) della trasmissione all’utente di tutte le informazioni per la corretta interpretazione del dato.
| Kuchay S, Giorgi C, Simoneschi D, Pagan J, Missiroli S, Saraf A, Florens L, Washburn MP, Collazo-Lorduy A, Castillo-Martin M, Cordon-Cardo C, Sebti SM, Pinton P, Pagano M (2017) PTEN counteracts FBXL2 to promote IP3R3- and Ca2+-mediated apoptosis limiting tumour growth. Nature 546:554-558. PubMed |
| Bonora M, Morganti C, Morciano G, Pedriali G, Lebiedzinska-Arciszewska M, Aquila G, Giorgi C, Rizzo P, Campo G, Ferrari R, Kroemer G, Wieckowski MR, Galluzzi L, Pinton P (2017) Mitochondrial permeability transition involves dissociation of F1FO ATP synthase dimers and C-ring conformation. EMBO Rep. 18:1077-1089. PubMed |
| Bonora M, Morganti C, Morciano G, Giorgi C, Wieckowski MR, Pinton P (2016) Comprehensive analysis of mitochondrial permeability transition pore activity in living cells using fluorescence-imaging-based techniques. Nat Protoc 11:1067-80. PubMed |
| Missiroli S, Bonora M, Patergnani S, Poletti F, Perrone M, Gafà R, Magri E, Raimondi A, Lanza G, Tacchetti C, Kroemer G, Pandolfi PP, Pinton P, Giorgi C (2016) PML at Mitochondria-Associated Membranes Is Critical for the Repression of Autophagy and Cancer Development. Cell Rep 16:2415-27. PubMed |
| Rimessi A, Bezzerri V, Patergnani S, Marchi S, Cabrini G, Pinton P (2015) Mitochondrial Ca2+-dependent NLRP3 activation exacerbates the Pseudomonas aeruginosa-driven inflammatory response in cystic fibrosis. Nat Commun 6:6201. PubMed |
| Giorgi C, Bonora M, Missiroli S, Poletti F, Ramirez FG, Morciano G, Morganti C, Pandolfi PP, Mammano F, Pinton P (2015) Intravital imaging reveals p53-dependent cancer cell death induced by phototherapy via calcium signaling. Oncotarget 6:1435-45. PubMed |
| Bonora M, De Marchi E, Patergnani S, Suski JM, Celsi F, Bononi A, Giorgi C, Marchi S, Rimessi A, Duszyński J, Pozzan T, Wieckowski MR, Pinton P (2014) Tumor necrosis factor-α impairs oligodendroglial differentiation through a mitochondria-dependent process. Cell Death Differ. 21:1198-208. PubMed |
| Rimessi A, Marchi S, Patergnani S, Pinton P (2014) H-Ras-driven tumoral maintenance is sustained through caveolin-1-dependent alterations in calcium signaling. Oncogene 33:2329-40. PubMed |
| Marchi S, Patergnani S, Pinton P (2014) The endoplasmic reticulum-mitochondria connection: one touch, multiple functions. Biochim. Biophys. Acta 1837:461-9. PubMed |
| Marchi S, Lupini L, Patergnani S, Rimessi A, Missiroli S, Bonora M, Bononi A, Corrà F, Giorgi C, De Marchi E, Poletti F, Gafà R, Lanza G, Negrini M, Rizzuto R, Pinton P (2013) Downregulation of the mitochondrial calcium uniporter by cancer-related miR-25. Curr. Biol. 23:58-63. PubMed |
| Bonora M, Bononi A, De Marchi E, Giorgi C, Lebiedzinska M, Marchi S, Patergnani S, Rimessi A, Suski JM, Wojtala A, Wieckowski MR, Kroemer G, Galluzzi L, Pinton P (2013) Role of the c subunit of the FO ATP synthase in mitochondrial permeability transition. Cell Cycle 12:674-83. PubMed |
| Chiabrando D, Marro S, Mercurio S, Giorgi C, Petrillo S, Vinchi F, Fiorito V, Fagoonee S, Camporeale A, Turco E, Merlo GR, Silengo L, Altruda F, Pinton P, Tolosano E (2012) The mitochondrial heme exporter FLVCR1b mediates erythroid differentiation. J. Clin. Invest. 122:4569-79. PubMed |
| Garcia-Cao I, Song MS, Hobbs RM, Laurent G, Giorgi C, de Boer VC, Anastasiou D, Ito K, Sasaki AT, Rameh L, Carracedo A, Vander Heiden MG, Cantley LC, Pinton P, Haigis MC, Pandolfi PP (2012) Systemic elevation of PTEN induces a tumor-suppressive metabolic state. Cell 149:49-62. PubMed |
| Pinton P, Giorgi C, Pandolfi PP (2011) The role of PML in the control of apoptotic cell fate: a new key player at ER-mitochondria sites. Cell Death Differ. 18:1450-6. PubMed |
| Giorgi C, Ito K, Lin HK, Santangelo C, Wieckowski MR, Lebiedzinska M, Bononi A, Bonora M, Duszynski J, Bernardi R, Rizzuto R, Tacchetti C, Pinton P, Pandolfi PP (2010) PML regulates apoptosis at endoplasmic reticulum by modulating calcium release. Science 330:1247-51. PubMed |
| Demaria M, Giorgi C, Lebiedzinska M, Esposito G, D'Angeli L, Bartoli A, Gough DJ, Turkson J, Levy DE, Watson CJ, Wieckowski MR, Provero P, Pinton P, Poli V (2010) A STAT3-mediated metabolic switch is involved in tumour transformation and STAT3 addiction. Aging (Albany NY) 2:823-42. PubMed |
| Goitre L, Balzac F, Degani S, Degan P, Marchi S, Pinton P, Retta SF (2010) KRIT1 regulates the homeostasis of intracellular reactive oxygen species. PLoS ONE 5:e11786. PubMed |
| Pavan C, Vindigni V, Michelotto L, Rimessi A, Abatangelo G, Cortivo R, Pinton P, Zavan B (2010) Weight gain related to treatment with atypical antipsychotics is due to activation of PKC-β. Pharmacogenomics J. 10:408-17. PubMed |
| Rimessi A, Marchi S, Fotino C, Romagnoli A, Huebner K, Croce CM, Pinton P, Rizzuto R (2009) Intramitochondrial calcium regulation by the FHIT gene product sensitizes to apoptosis. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 106:12753-8. PubMed |
| Aguiari P, Leo S, Zavan B, Vindigni V, Rimessi A, Bianchi K, Franzin C, Cortivo R, Rossato M, Vettor R, Abatangelo G, Pozzan T, Pinton P, Rizzuto R (2008) High glucose induces adipogenic differentiation of muscle-derived stem cells. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 105:1226-31. PubMed |
| Rimessi A, Rizzuto R, Pinton P (2007) Differential recruitment of PKC isoforms in HeLa cells during redox stress. Cell Stress Chaperones 12:291-8. PubMed |
| Pinton P, Rimessi A, Marchi S, Orsini F, Migliaccio E, Giorgio M, Contursi C, Minucci S, Mantovani F, Wieckowski MR, Del Sal G, Pelicci PG, Rizzuto R (2007) Protein kinase C beta and prolyl isomerase 1 regulate mitochondrial effects of the life-span determinant p66Shc. Science 315:659-63. PubMed |
| Pinton P, Leo S, Wieckowski MR, Di Benedetto G, Rizzuto R (2004) Long-term modulation of mitochondrial Ca2+ signals by protein kinase C isozymes. J. Cell Biol. 165:223-32. PubMed |
| Rapizzi E, Pinton P, Szabadkai G, Wieckowski MR, Vandecasteele G, Baird G, Tuft RA, Fogarty KE, Rizzuto R (2002) Recombinant expression of the voltage-dependent anion channel enhances the transfer of Ca2+ microdomains to mitochondria. J. Cell Biol. 159:613-24. PubMed |
| Rizzuto R, Pinton P, Carrington W, Fay FS, Fogarty KE, Lifshitz LM, Tuft RA, Pozzan T (1998) Close contacts with the endoplasmic reticulum as determinants of mitochondrial Ca2+ responses. Science 280:1763-6. PubMed |
Il centro di microscopia ottica organizza periodicamente corsi di Microscopia Digitale e Confocale indirizzati a tutti coloro che sono interessati ad acquisire gli elementi di base necessari per utilizzare la microscopia confocale in ambito biologico. I corsi prevedono lezioni teoriche in aula e sessioni pratiche sullo strumento, al fine di apprendere le metodiche e le procedure per acquisire immagini informative e di qualità. Il termine per le iscrizioni verrà indicato nel calendario annuale. Al termine del corso sarà rilasciato un certificato di partecipazione.
| Codice | Descrizione sintetica della prestazione offerta | Prezzo (€ per ora) |
| Consulenza preliminare per la formulazione del disegno sperimentale; nel corso della consulenza si potrà effettuare un preventivo del costo complessivo delle analisi richieste. Il Servizio offre consulenza per progetti specifici, fornendo preventivi gratuiti in base alle necessità dell’utente. Si invita a contattare il referente per esigenze individuali non specificate nel tariffario, in quanto i pacchetti offerti possono essere modificati in base alle esigenze. Per analisi di routine i prezzi potranno essere concordati (eventuale abbonamento). |
0.00 | |
| Nikon Confocal | ||
| MC-01 | Preparazione del campione | 100.00 |
| Osservazione del campione | ||
| MC-02 | - Assistenza del personale | 120.00 |
| MC-03 | - Acquisizione | 130.00 |
| MC-04 | Analisi dei dati | 140.00 |
| MC-05 | Materiale | secondo l’utilizzo |
| Xcellence | ||
| MC-06 | Preparazione del campione | 100.00 |
| Osservazione del campione | ||
| MC-07 | - Assistenza del personale | 120.00 |
| MC-08 | - Acquisizione | 30.00 |
| MC-09 | Analisi dei dati | 140.00 |
| MC-10 | Materiale | secondo l’utilizzo |
| Scan^R HTM | ||
| MC-11 | Preparazione del campione | 100.00 |
| Osservazione del campione | ||
| MC-12 | - Assistenza del personale | 120.00 |
| MC-13 | - Acquisizione | 70.00 |
| MC-14 | Analisi dei dati | 140.00 |
| MC-15 | Materiale | secondo l’utilizzo |
| Corsi Teorici e Pratici | ||
| MC-16 | Corso Teorico | 1000.00 |
| MC-17 | Corso Pratico (€ /ora / persona) (fino a quattro persone per gruppo). Non sono richieste ulteriori spese per l’utilizzo degli strumenti. |
120.00 |
| Utilizzo Indipendente (Solo se autorizzati) | ||
| Osservazione del campione | ||
| MC-18 | -Nikon | 120.00 |
| MC-19 | -Xcellence | 30.00 |
| MC-20 | -Scan^R | 130.00 |
| MC-21 | Utilizzo della Workstation per l’analisi dei dati | 70.00 |
| MC-22 | Materiale | secondo l’utilizzo |
| XF96 Extracellular Flux Analyzer | ||
| MC-23 | 1Assistenza del personale | 120.00€/ora |
| MC-24 | 2Analisi mito stress (comprensivo di: mito stress kit, cell culture microplate, XF assay medium, sensor cartridge, XF calibrant) | 270.00€/esperimento |
| MC-25 | 2Analisi glycolysis stress (comprensivo di: glycolysis stress kit, cell culture microplate, XF assay medium, sensor cartridge, XF calibrant) | 360.00€/esperimento |
| MC-26 | 2Fatty Acid oxidation assay (comprensivo di: mito stress kit, XF Palmitate-BSA FAO substrate kit, cell culture microplate, XF assay medium, sensor cartridge, XF calibrant | 620.00€/esperimento |
| MC-27 | Utilizzo cell culture microplate | 18€/pezzo |
| Intravital Imaging | ||
| Osservazione del campione | ||
| MC-28 | - Assistenza del personale | 160.00/ora |
| MC-29 | - Acquisizione | 160.00/ora |
| MC-30 | - Utilizzo del microiniettore | 180.00/ora |
| MC-31 | Analisi dei dati | 200.00/ora |
| MC-32 | Materiale | secondo l’utilizzo |
Alcune prestazioni/prodotti offerti possono usufruire della collaborazione/integrazione con altri servizi del Laboratorio LTTA.
Ciascun servizio include la descrizione della procedura e la fornitura di immagini ai fini di eventuali pubblicazioni scientifiche.
I prezzi sono da intendere senza IVA e soggetti ad aggiornamento in base alle tariffe dei prodotti di consumo necessari per la prestazione (ogni 12 mesi).
1L’acquisto dei pacchetti mito stress e glycolysis stress comprende l’assistenza del personale una tantum. La richiesta di assistenza per un periodo superiore a 30 minuti verrà addebitato come da voce tariffario.
2Qualora la prenotazione dovesse essere disdetta 24h prima dell’utilizzo dello strumento verrà addebitato esclusivamente il costo della cell culture microplate.
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44121 Ferrara
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